Blood & Cell Culture DNA Mini Kit（Genomic-tip）
血液、细胞DNA小量提取试剂盒（阴离子交换柱法）
¥2298.00
CW3712S
- + [ 现货 ]
加入购物车
- 产品介绍
- 产品参数
- 产品说明书
- FAQs
| 保存条件 | 运输条件 |
|---|---|
| Buffer C1 2-8℃，others RT (15-30℃) | 室温 |
Buffer C1和蒸馏水的比例不正确。确保在步骤1中将Buffer C1和蒸馏水以正确的比例（1：3）添加到样品中。
1. 细胞或血液样本量过少会导致起始DNA总量不足，应严格按照说明书要求加入相应体积的样本量。
2. 缓冲液保存不当可能影响实验效果， Buffer C1须密封保存于2-8℃冰箱，使用前检查是否有蒸发或污染情况，确保试剂质量。
3. 裂解步骤中Buffer C1和蒸馏水的比例严格控制在1:3，充分混匀后冰上孵育10分钟，确保样本完全裂解。
4. 使用冷冻样本前必须完全解冻，避免反复冻融。
5. Genomic-tip 20/G柱子使用前须用1mL Buffer CBT平衡，让液体依靠重力自然流下，切勿施加外力加压，平衡不充分会显著降低DNA结合效率。
6. 基因组DNA沉淀步骤需特别小心，离心后吸弃上清时枪头不要触碰管底沉淀，此步骤操作不当会导致DNA大量丢失。
7. 洗脱Buffer QF可提前在50℃水浴中预热，预热后的Buffer QF能提高DNA洗脱效率。
上样前须将裂解液充分离心，并用移液枪小心吸取上清液，避免吸入沉淀物或细胞碎片；按说明书控制样本量，过量样本会导致树脂超载而堵塞。
若下游实验对pH值敏感，可采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5（可用NaOH调节），pH值低于7.0会显著降低洗脱效率。如需长期保存洗脱产物，推荐使用Buffer TB洗脱，并于-20℃保存。
DNA在下游应用中表现不佳通常由以下原因导致：
1. 洗脱液中DNA含量极低。解决办法：请参考前文A2部分的解决方案。
2. 乙醇残留。解决办法：70%乙醇洗涤后，彻底吸弃上清，室温风干 5–10分钟
3. 存在盐离子残留。解决办法：确保异丙醇在室温（15 - 25°C）下沉淀，并用冷的70%乙醇洗涤沉淀两次；可重新沉淀DNA以除去盐。
4. DNA用量过多影响下游实验。解决办法：过量DNA可能抑制酶反应，建议使用分光光度计在260nm处测定DNA浓度，精确控制使用量。
操作过程中需轻柔混匀（避免剧烈震荡或涡旋），减少剪切力。
使用脉冲场电泳（PFGE），条件：1%琼脂糖，0.5X TBE，6 V/cm，脉冲时间1-25 s，电泳16小时。
